В ряде случаев результаты наружного осмотра объектов исследования, обнаружение в них инородных включений, определение рН среды, запаха и окраски объектов позволяют предположить, чем произошло отравление, и включить в план химико-токсикологического анализа исследование предполагаемого вещества.
Наличие инородных включений. При осмотре содержимого желудка невооруженным глазом, а затем с помощью лупы или микроскопа в нем могут быть обнаружены фарфоровидные крупинки оксида мышьяка (III), призматические кристаллы нитрата стрихнина, семена или кусочки ядовитых растений и др. Обнаруженные подозрительные инородные включения отбирают пинцетом и производят их исследование.
Исследование отобранных кусочков растений, грибов, семян, порошка индийской конопли и других инородных включений растительного происхождения должны производить лица, имеющие познания в области фармакогнозии.
Запах объектов исследования. Иногда специфический запах содержимого желудка может указывать на наличие определенного вещества, вызвавшего отравление. Так, например, запах горького миндаля указывает на возможное отравление цианидами. Содержимое желудка, имеющее запах пиридиновых оснований, указывает на возможное отравление денатурированным спиртом. При отравлении фенолом содержимое желудка имеет запах этого вещества. Характерный запах может иметь содержимое желудка и при отравлении другими пахнущими веществами.
Запах внутренних органов, в том числе и содержимого желудка, можно определять тогда, когда эти объекты не подверглись гнилостным изменениям. Запах вещества, вызвавшего отравление, в загнивших объектах маскируется запахом продуктов гниения (сероводорода, аммиака и др.).
Окраска объекта. Определение окраски объектов исследования (главным образом окраски содержимого желудка) имеет определенное значение для предположительного заключения о наличии вещества, вызвавшего отравление.
Желтая окраска объектов указывает на возможное отравление пикриновой кислотой, акрихином, хроматами, азотной кислотой, которая дает окраску с белками стенок желудка, некоторыми анилиновыми красителями и др.
Зеленая окраска указывает на возможное отравление солями меди, соединениями мышьяка (парижская зелень), некоторыми красителями и др.
Черная окраска слизистой желудка указывает на возможное отравление концентрированной серной кислотой.
Розовая окраска содержимого желудка может быть после приема внутрь сулемы, окрашенной эозином.
Определение pΗ среды. Определение рН среды содержимого желудка имеет большое значение для предварительного решения вопроса о веществах, которые могли вызвать отравление.
Кислотность и щелочность среды объектов исследования определяют индикаторами. В качестве индикаторов для определения рН содержимого желудка и других объектов исследования применяют лакмус (интервал рН перехода красной окраски в синюю 5,0—8,0), конго красный (интервал рН перехода сине-фиолетовой окраски в красную 3,0—5,2), фенолфталеин (интервал рН перехода бесцветного раствора в красный 8,2—10,0). При использовании этих индикаторов в основном применяются не их растворы, а полоски бумажек, пропитанных соответствующими растворами индикаторов.
С помощью индикаторных бумажек, пропитанных фенолфталеином, лакмусом и конго красным, можно установить только реакцию среды. Однако эти индикаторы не позволяют ответить на вопрос: какой рН имеют исследуемые объекты? Поэтому определение кислотности и щелочности среды с помощью бумажек, пропитанных универсальным индикатором, имеет преимущество перед определением среды с помощью бумажек, пропитанных лакмусом, конго красным и фенолфталеином.
Для определения рН среды небольшое количество исследуемого объекта измельчают, вносят в пробирку, прибавляют дистиллированную воду и хорошо взбалтывают. Водную вытяжку отделяют от твердого осадка. В полученной водной вытяжке определяют кислотность или щелочность среды с помощью индикаторных бумажек.
Изменение сине-фиолетовой окраски индикаторной бумажки, пропитанной раствором конго красного, в красную указывает на наличие в исследуемом объекте минеральных кислот или больших количеств органических кислот. При наличии указанных кислот среда имеет рН = 3,0 и ниже (по универсальному индикатору). Слабокислую реакцию (рН = 4,0...6,5) могут иметь объекты за счет кислотного брожения, а также объекты, содержащие малые количества органических кислот, солей некоторых тяжелых металлов, при гидролизе которых среда становится слабокислой.
Для определения щелочной реакции водных вытяжек из биологического материала применяют индикаторные бумажки, пропитанные раствором фенолфталеина или универсальным индикатором. Красная окраска бумажки, пропитанной фенолфталеином, указывает на наличие щелочей в водной вытяжке из биологического материала. Щелочная среда водных вытяжек может быть обусловлена наличием в биологическом материале едких щелочей, карбонатов щелочных металлов, аммиака, легко гидролизуемых солей и других соединений.
Чтобы установить наличие едких щелочей в водных вытяжках из биологического материала, поступают так: 1—2 мл водной вытяжки вносят в пробирку, прибавляют 1—2 капли спиртового раствора фенолфталеина (Г: 1000). Если водная вытяжка имеет щелочную реакцию, то при наличии фенолфталеина она приобретает розовую или красную окраску. Затем к окрашенному раствору прибавляют 3—5 капель 10 %-го раствора нитрата или хлорида бария. Если при этом сохраняется розовая или красная окраска раствора, то это свидетельствует о наличие едких щелочей в биологическом материале. Если же красная окраска раствора исчезает и образуется белый осадок или муть, то это свидетельствует о наличии карбонатов.
Для определения аммиака в исследуемом биологическом материале проводят следующие опыты: в коническую колбу вместимостью 50 мл вносят немного исследуемого объекта (содержимое желудка, рвотные массы). Колбу закрывают корковой пробкой, к нижней поверхности которой прикреплены три индикаторные бумажки: смоченная водой красная лакмусовая бумажка, бумажка, смоченная щелочным раствором ацетата свинца, и бумажка, смоченная щелочным раствором сульфата меди. Если в исследуемом объекте содержится аммиак, то смоченная водой красная лакмусовая бумажка и бумажка, смоченная щелочным раствором сульфата меди, синеют.
При наличии сероводорода в исследуемом объекте бумажка, смоченная щелочным раствором ацетата свинца, чернеет.
Наличие в исследуемом объекте аммиака и сероводорода свидетельствует о происходящих процессах гниения. Поэтому исследование биологического материала на наличие аммиака производить невозможно.
Таким образом, определение рН исследуемого объекта позволяет включить минеральные кислоты, едкие щелочи и аммиак η план химико-токсикологического анализа или исключить их из этого плана.
Наличие консервантов в объектах. Выше было указано, что консервирование объектов химико-токсикологического анализа этиловым спиртом допускается только в особых случаях (см. гл. 1,§ 1).
Консервирование объектов химико-токсикологического анализа формалином и фенолом не допускается, так как эти вещества относятся к числу ядов, на наличие которых должно производиться исследование биологического материала при отравлении неизвестными соединениями. Поэтому, приступая к химико-токсикологическому анализу, необходимо знать, есть ли в объектах анализа консерванты и какие?
По ряду причин консервирование биологического материала этиловым спиртом тоже является нежелательным. Этиловый спирт может быть причиной отравления. При консервировании биологического материала этим спиртом исключается возможность определения его как вещества, вызвавшего отравление. Кроме этого, наличие в биологическом материале этилового спирта как консерванта мешает разрушению биологического материала при исследовании его на наличие металлических ядов. Поэтому перед разрушением таких объектов необходимо освобождать их от этилового спирта.
Если в химико-токсикологическую лабораторию присланы объекты исследования, консервированные фенолом, формальдегидом или другими веществами, то эксперт-химик должен составить акт о нарушении правил направления объектов на химико-токсикологический анализ и отправить его судебно-следственным органам, назначившим экспертизу.